监控每天都做什么:sitefinding-PCr

来源:百度文库 编辑:偶看新闻 时间:2024/04/28 05:24:33
我的问题已经得到了Tiger老师的详细答复,非常感谢热心的Tiger老师!!
经Tiger老师同意,现将答复的内容贴在下面供大家参考:

问: tail-PCR和sitefinding-PCR那一个更可靠些?还是各有长处?
2 sitefinder的设计中,5‘端到酶切位点的这一段是不是主要是为了让非特异性产物形成loop?那么这一段序列是否可以通用?还是有别的考虑?
3 SFP引物和特异性引物的设计要考虑哪些因素?是否要考虑退火温度的问题?
4 在taq酶的选择上,是否必须是不加A的taq酶?
5 退火温度的设定要考虑哪些因素?


1 tail-PCR和sitefinding-PCR都可靠,但是后者操作起来简单的多。
2 酶切位点是为了克隆而设计的,也就是说可以用其他酶切位点,但是现在我发现产物可以直接用来测序。
3 引物最好不要自身形成二级结构,退火温度大于60度就行。
4 可以不用不加A的taq酶,但是我在国内的时候发现一个最佳组合是天为的long taq加TaKaRa的LA buffer I

问:酶切位点前的那一段(就是形成loop的那一段)是否可以通用?如果要自己设计,要考虑谢什么因素?

答:酶切位点前的那一段可以通用,目前已经成功用于细菌,病毒,拟南芥,斑马鱼。
另外说明:
如果你要扩增微生物的未知序列,SiteFinder的3/-端可以不加N,但是得保证SiteFinder,以及与此对应的引物自身不形成二级结构;如果要扩增植物或者动物的未知序列,我已经将SiteFinder 优化,将其换成了
5'-GACACGCTACTCCAACACACCACCTCGCACAGCGTCCTCAA cctgcaggI(TGC)I(ATC)IGCTC-3' (将原来的NNNN换成了I(TGC)I(ATC)I将原来的NotI位点换成了Sse8387 I位点,(TGC)表示该位点是T或G或者C,即简并位点,设计引物时用一个字母代替,可能不同的公司用的字母不完全一致)。使用该序列一般只需要两轮扩增即可得到很好的结果,产物可以直接用原来用来做第三轮扩增的已知序列特异引物测序。